BMS 114 · Tronc communSection 5.6 · Croissance, nutrition et culture des bactéries
Section 23 sur 33
Les sept milieux de laboratoire courants
Classer les sept milieux de laboratoire courants selon leur composition et leur usage, expliquer la chimie d’un exemple nommé dans chaque classe, et choisir le bon milieu pour un prélèvement provenant d’un patient chez qui l’on suspecte une infection bactérienne.
Nouveau dans ce cours ? Comment fonctionne chaque section
Apprendre présente une seule idée courte à la fois. Chaque idée commence par une phrase simple, puis l’explique, donne un exemple et vous pose une petite question à laquelle vous pouvez répondre tout de suite.
Explorer montre un schéma des mêmes idées. Cliquez sur les parties numérotées pour lire ce que chacune représente.
Vérifier pose quelques questions. Répondez correctement à toutes pour terminer la section et débloquer la suivante.
« Approfondir » est facultatif. Il ajoute le mécanisme et des détails pour quand vous serez prêt — aucune notion nécessaire aux questions n’y est cachée.
Pourquoi c’est important
Le choix du milieu est la première décision clinique que le laboratoire prend à propos d’un prélèvement, et il détermine si le pathogène sera trouvé ou non. Étalez des selles sans étape d’enrichissement et quelques bacilles typhiques disparaissent parmi des millions de coliformes ; ensemencez un écouvillon de gorge sur une simple gélose nutritive et la flore normale recouvre le streptocoque ; déposez un écouvillon urétral sur une gélose au sang ordinaire et le gonocoque peut ne jamais apparaître. Une infirmière qui comprend le rôle de chaque milieu interprète correctement une mention de « flore normale mélangée », saisit pourquoi une culture négative ne signifie pas l’absence d’infection, et protège le résultat en recueillant le prélèvement avant la première dose d’antibiotique. La boîte de culture n’est pas un détail de laboratoire : c’est l’étape qui décide si le traitement du patient reposera sur des preuves ou sur des suppositions.
Ce qu’il faut savoir avant
Il vous suffit de retenir, de la section précédente, qu’un milieu de culture est une préparation nutritive qui permet la croissance au laboratoire et que la gélose est l’agent solidifiant. Chaque terme de catégorie employé ici — milieu de base, enrichi, sélectif, d’enrichissement, différentiel, de transport et de conservation — est défini au moment où il apparaît. Aucune chimie au-delà du niveau scolaire n’est supposée : un sel, un acide, un colorant et un changement de couleur suffisent pour suivre toutes les explications.
Mots à connaître (5)
Milieu de culture
Une préparation nutritive, liquide ou solide, fabriquée au laboratoire pour permettre la croissance des micro-organismes hors de l’organisme. La gélose nutritive et l’eau peptonée sont deux milieux de culture simples.
Organisme exigeant
Un micro-organisme qui ne pousse pas sur un milieu simple parce qu’il ne sait pas fabriquer certaines vitamines, certains acides aminés ou facteurs de croissance et doit les recevoir tout prêts. Neisseria gonorrhoeae est exigeant : il ne pousse que sur un milieu enrichi comme la gélose chocolat.
Milieu sélectif
Un milieu qui contient une substance inhibitrice empêchant la croissance des organismes indésirables tandis que celui que l’on recherche survit. La gélose MacConkey contient des sels biliaires, qui arrêtent la plupart des organismes à Gram positif.
Milieu différentiel (indicateur)
Un milieu qui laisse pousser plusieurs sortes d’organismes mais les rend visuellement différents, généralement parce qu’un colorant change de couleur lorsqu’un sucre donné est fermenté. Sur gélose MacConkey, les fermentateurs du lactose donnent des colonies roses et les non-fermentateurs restent pâles.
Milieu d’enrichissement
Un milieu liquide qui augmente le nombre d’un organisme recherché, présent en très petit nombre, avant l’ensemencement de l’échantillon sur un milieu solide. Le bouillon au sélénite F enrichit Salmonella Typhi à partir de selles avant l’ensemencement.
Une idée à la foisIdée 1 / 7
En une phrase Les sept milieux courants se classent selon ce qu’ils font aux organismes d’un prélèvement, et un même milieu peut appartenir à plusieurs groupes.
Sept milieux, et quatre questions qui les séparent
Les sept milieux courants sont les milieux de base, enrichis, sélectifs, d’enrichissement, indicateurs ou différentiels, de transport et de conservation. Ils se confondent facilement : distinguons quatre questions. Premièrement, le milieu empêche-t-il la croissance des organismes indésirables ? Il est alors sélectif. Deuxièmement, les laisse-t-il pousser tout en les marquant différemment ? Il est alors différentiel, ou indicateur, car un colorant qu’il contient change de couleur. Troisièmement, apporte-t-il des nutriments — sang, œuf ou sérum — pour qu’un organisme exigeant puisse pousser ? Il est alors enrichi. Quatrièmement, est-ce un liquide qui multiplie un organisme rare avant l’ensemencement ? C’est un milieu d’enrichissement. Une même boîte peut répondre à plusieurs questions : la gélose mannitol-sel est sélective et différentielle, et le milieu de Lowenstein–Jensen est enrichi et sélectif.
Par exemple
La gélose MacConkey joue deux rôles à la fois : les sels biliaires la rendent sélective en arrêtant les organismes à Gram positif, et le lactose avec le rouge neutre la rendent différentielle, car les colonies fermentantes deviennent roses.
Petite vérification
Un milieu contient un colorant qui devient rose lorsque le lactose est fermenté, mais rien qui inhibe un organisme. Est-il sélectif, différentiel ou les deux ?
Afficher la réponse
Il est seulement différentiel. Un milieu sélectif doit contenir un élément inhibiteur : sel biliaire, antibiotique, colorant toxique pour les concurrents ou forte concentration de sel. Un colorant qui se contente de signaler une transformation chimique marque les colonies sans empêcher quoi que ce soit de pousser.
Lire les explications détaillées
Des selles à l’espèce : la chaîne de la typhoïde, milieu par milieu
Une suspicion de typhoïde est une chaîne de décisions qui commence bien avant l’ouverture d’une boîte. Salmonella enterica sérovar Typhi est avalée avec de l’eau ou des aliments contaminés, franchit la muqueuse intestinale, se multiplie dans les ganglions mésentériques et gagne la circulation sanguine. Le patient développe alors une fièvre progressive, des céphalées, un inconfort abdominal, puis, en deuxième semaine, des taches rosées sur le tronc et une rate augmentée. Comme l’organisme est précoce dans le sang et plus tardif dans les selles, le prélèvement dépend de la semaine de la maladie : l’hémoculture est la plus rentable en première semaine, la coproculture ou l’uroculture en deuxième et troisième semaines, et la culture de moelle osseuse — inconfortable mais la plus sensible — est réservée aux cas difficiles. Le point infirmier vient en premier : le prélèvement doit être fait avant la première dose d’antibiotique, car une seule dose peut supprimer l’organisme et transformer un vrai positif en une « absence de croissance » trompeuse. Si le transport est retardé, les selles sont placées en milieu de Cary-Blair, qui garde l’organisme vivant sans le laisser proliférer. Une fois les selles au laboratoire, l’ensemencement direct ne suffit généralement pas. Un gramme de matières fécales contient des centaines de millions de bactéries et Salmonella n’en représente qu’une infime minorité : le prélèvement est donc d’abord mis en bouillon d’enrichissement — classiquement au sélénite F, ou au tétrathionate, ou au Rappaport–Vassiliadis incubé à 42 °C. Le sélénite est réduit par la flore fécale, et les produits formés sont toxiques pour les coliformes tandis que Salmonella survit et se multiplie ; après douze à dix-huit heures à 37 °C, le rapport entre Salmonella et ses concurrents a suffisamment changé pour que le repiquage réussisse. Une incubation trop longue laisse les concurrents reprendre l’avantage : c’est pourquoi le bouillon est repiqué après un délai fixe plutôt que laissé jusqu’à la garde suivante. Le bouillon est ensuite étalé sur des boîtes sélectives et différentielles. La gélose MacConkey montre des colonies pâles, non fermentantes du lactose, car Salmonella ne fermente pas le lactose. La gélose Salmonella–Shigella ajoute des sels biliaires et des colorants qui suppriment les organismes à Gram positif et la plupart des coliformes, et son citrate ferrique réagit au sulfure d’hydrogène produit par Salmonella pour déposer du sulfure de fer noir au centre de chaque colonie ; la gélose au sulfite de bismuth donne des colonies noires à reflet métallique. Une identification présomptive est faite à partir de la boîte, puis la confirmation repose sur des tests biochimiques — gélose triple sucre fer donnant une pente alcaline, un culot acide et un noircissement par le sulfure d’hydrogène, uréase négative, citrate positif et indole négatif — puis sur la sérologie : agglutination de la souche avec les antisérums O somatiques et H flagellaires selon le schéma de Kauffmann–White, ou détection de l’antigène capsulaire Vi. Le test de Widal sur le sérum du patient n’est plus considéré comme fiable. Les laboratoires modernes ajoutent la spectrométrie de masse de type MALDI-TOF, ou une méthode moléculaire, lorsque la souche est inhabituelle ou lente. Deux conséquences restent à l’infirmière. La première est de santé publique : la typhoïde se transmet par la voie féco-orale ; l’eau sûre, l’évacuation sûre des matières fécales, l’hygiène des mains et l’exclusion d’un patient infectieux de la manipulation des aliments sont donc ce qui arrête une épidémie, et tout cas doit être déclaré. La seconde est le portage chronique : une minorité de patients gardent l’organisme dans la vésicule biliaire et l’excrètent de façon intermittente pendant des années — la femme restée dans l’histoire sous le nom de Mary la Typhoïde en est un exemple — et ces porteurs alimentent de nouvelles épidémies. Le traitement doit donc suivre la sensibilité, car la résistance aux anciens médicaments est répandue, et la vaccination protège la personne qui la reçoit plutôt que la communauté qui l’entoure.
Pourquoi la gélose chocolat existe : les exigences exactes de Neisseria gonorrhoeae
Neisseria gonorrhoeae est un diplocoque à Gram négatif qui vit à l’intérieur des leucocytes polynucléaires du pus. Il provoque chez l’homme une urétrite avec dysurie et écoulement, chez la femme une cervicite souvent silencieuse pouvant remonter en infection pelvienne et en infertilité, et, chez le nouveau-né accouché par un col infecté, une ophtalmie néonatale. Au laboratoire, il est oxydase-positif et extrêmement exigeant, pour une raison nutritionnelle et non seulement environnementale : l’organisme ne sait pas synthétiser plusieurs composés dont il a besoin et doit les trouver déjà formés dans le milieu. Ses exigences sont précises. Il lui faut de l’hémoglobine comme source de fer, de la nicotinamide adénine dinucléotide, le coenzyme aussi appelé facteur V, ainsi que de la cystine ou de la cystéine et d’autres acides aminés. Il lui faut aussi une atmosphère humide enrichie en dioxyde de carbone, généralement cinq pour cent : c’est pourquoi les boîtes sont incubées en jarre à dioxyde de carbone ou en jarre à bougie, à une température maintenue entre 35 et 37 °C. La gélose nutritive simple n’apporte rien de tout cela, et la gélose au sang ordinaire ne suffit souvent pas non plus, car les globules rouges y restent intacts et gardent leurs cofacteurs intracellulaires. La gélose chocolat résout le problème par une étape physique et non chimique. Le sang ajouté à la base est chauffé à environ quatre-vingts degrés Celsius jusqu’à ce que les globules rouges s’hémolysent, c’est-à-dire éclatent, libérant leur hémoglobine et leur nicotinamide adénine dinucléotide intracellulaire dans le milieu. Le résultat n’est pas couleur chocolat à cause du chocolat, mais parce que le sang hémolysé brunit ; le nom est un surnom de laboratoire pour la gélose au sang chauffée. C’est un milieu enrichi, non sélectif : il ne contient aucun inhibiteur, donc tout ce qui peut y pousser y poussera. Cette distinction compte en pratique, car un prélèvement gonococcique contient rarement le seul gonocoque. Un écouvillon urétral chez l’homme peut être presque pur, mais un écouvillon endocervical, rectal ou pharyngé porte une flore normale dense, qui recouvrirait le pathogène sur gélose chocolat ordinaire. Le laboratoire utilise donc une variante sélective, comme le milieu de Thayer–Martin ou de New York City : de la gélose chocolat additionnée de vancomycine pour supprimer les organismes à Gram positif, de colistine pour supprimer les organismes à Gram négatif autres que Neisseria, de nystatine pour les levures et de triméthoprime pour Proteus. Cette boîte est à la fois enrichie et sélective, exactement le chevauchement contre lequel les sept catégories mettent en garde. Pour l’infirmière, les conséquences pratiques sont concrètes. L’écouvillon doit atteindre la boîte rapidement, les boîtes sont ramenées à température ambiante avant l’ensemencement, et le prélèvement voyage en atmosphère enrichie en dioxyde de carbone ; la réfrigération est évitée car le froid tue l’organisme, et un écouvillon gonococcique n’est donc jamais placé au réfrigérateur pour la nuit. La culture reste précieuse car elle donne un résultat de sensibilité, mais l’amplification des acides nucléiques sur les premières urines ou sur un auto-prélèvement vaginal est aujourd’hui plus sensible pour le diagnostic et souvent utilisée en premier. Le traitement est devenu plus difficile à mesure que la résistance s’accumulait : d’abord à la pénicilline par les souches productrices de pénicillinase, puis aux fluoroquinolones, et maintenant avec une sensibilité diminuée aux céphalosporines ; les recommandations changent donc, et le dépistage des partenaires et le conseil de prévention comptent autant que l’ordonnance.
Comment une boîte devient sélective, et pourquoi l’enrichissement change le rapport
La sélectivité est un artifice chimique exercé sur une population mixte, et chaque inhibiteur agit différemment. Les sels biliaires et le désoxycholate de sodium sont des molécules tensioactives qui désorganisent les membranes des organismes à Gram positif : c’est pourquoi la gélose MacConkey, la gélose Salmonella–Shigella et la gélose au désoxycholate s’emploient sur les selles, prélèvement dans lequel les organismes à Gram positif n’ont pas d’intérêt. Le violet cristal est un colorant qui pénètre la paroi plus mince des Gram positif et bloque la croissance. Le vert malachite, inhibiteur du milieu de Lowenstein–Jensen, est un colorant auquel Mycobacterium tuberculosis est relativement résistant : il supprime donc les contaminants d’un crachat tandis que le bacille tuberculeux survit. Le tellurite, employé dans le taurocholate de Monsur et dans les milieux au tellurite de potassium pour la diphtérie, est réduit par de nombreuses bactéries en un dépôt métallique toxique. Les antibiotiques servent de la même façon dans le milieu de Thayer–Martin, où la vancomycine, la colistine, la nystatine et le triméthoprime éliminent chacun une classe de concurrents. Une forte concentration de sel agit par osmose plutôt que par intoxication, et un pH alcalin fait le même travail chimiquement : l’eau peptonée alcaline favorise Vibrio, car les vibrions tolèrent une alcalinité qui supprime une grande partie de la flore fécale. Une boîte sélective n’aide toutefois que si l’organisme est présent en nombre détectable. C’est là qu’un bouillon d’enrichissement gagne sa place, et la raison tient à un rapport et non à un comptage total. Les selles contiennent peut-être cent millions d’organismes par gramme, et dans la typhoïde les Salmonella peuvent n’être que quelques centaines : un rapport d’environ un sur un million. Une boîte sélective peut supprimer les concurrents, mais elle ne peut pas multiplier la cible ; les quelques colonies de Salmonella qui apparaissent peuvent donc encore être manquées ou envahies. Un bouillon d’enrichissement modifie le rapport lui-même : dans le sélénite F, les concurrents sont inhibés et les Salmonella se divisent, si bien qu’après l’intervalle de repiquage le rapport peut approcher un sur mille, ce qu’une boîte sélective sait alors traiter. La même logique explique pourquoi le bouillon est repiqué après douze à dix-huit heures plutôt que laissé une journée entière : une incubation trop longue permet aux concurrents survivants de se multiplier et l’avantage est perdu. La traduction clinique est une leçon de lecture : une culture est une hypothèse, non un fait. Une boîte sélective répond à la question posée, et pas plus : la gélose mannitol-sel cultivera Staphylococcus aureus, mais aussi les staphylocoques à coagulase négative de la peau, et une colonie jaune n’est donc pas encore un diagnostic. La gélose MacConkey cultivera Salmonella, mais aussi tout autre bacille à Gram négatif non fermentant le lactose venu de l’intestin. C’est pourquoi le laboratoire avance par étapes — identification présomptive sur la boîte, puis confirmation biochimique, puis sérologie ou méthode moléculaire — et pourquoi l’infirmière ne doit jamais traiter un résultat de boîte isolément de la coloration de Gram, du site de prélèvement et de l’état du patient. Un milieu est un outil pour poser une question, et tout outil a ses limites.
Explorez le schéma
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Sept milieux courants : ce que chacun fait, et l’exemple qui l’incarne
Lisez les sept lignes de haut en bas. Le mot de gauche nomme la catégorie, la colonne du milieu énonce l’action unique qui la définit, et la colonne de droite donne le milieu réellement utilisé au laboratoire. Remarquez qu’une ligne sélective inhibe, qu’une ligne différentielle marque, qu’une ligne enrichie nourrit et qu’une ligne d’enrichissement multiplie ; les deux dernières lignes gardent un organisme vivant plutôt que de le faire croître.
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01 / 7Base : le milieu simple
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Base : le milieu simple
Un milieu de base n’apporte que de l’eau, une source de carbone et d’azote et des sels minéraux, sans sang, sérum, sel biliaire ni antibiotique : il n’inhibe donc rien et cultive tout organisme peu exigeant. La gélose nutritive en est l’exemple solide et l’eau peptonée l’exemple liquide ; les deux servent au repiquage et de base aux milieux plus riches, jamais à isoler un pathogène d’un prélèvement porteur d’une flore normale.
Tableau comparatif et non protocole de culture : les milieux cités sont des exemples typiques, et les concentrations inhibitrices, les durées d’incubation et la formulation exacte varient selon le laboratoire et l’organisme. Un milieu peut relever de plusieurs colonnes — la gélose mannitol-sel est sélective et différentielle, Lowenstein–Jensen est enrichi et sélectif — la ligne est donc une étiquette, non une case exclusive.
Points clés à retenir
✓Les sept milieux courants sont les milieux de base, enrichis, sélectifs, d’enrichissement, différentiels, de transport et de conservation.
✓Un milieu sélectif inhibe les organismes indésirables ; un milieu différentiel les laisse pousser mais les marque par un indicateur ; un milieu enrichi apporte sang, œuf ou sérum aux organismes exigeants ; un milieu d’enrichissement est un liquide qui multiplie un organisme rare avant l’ensemencement.
✓La gélose nutritive et l’eau peptonée sont des milieux de base pour les organismes peu exigeants et le repiquage ; la gélose au sang, la gélose chocolat, la pente de sérum de Lœffler, le taurocholate de Monsur et le milieu de Lowenstein–Jensen sont enrichis.
✓La gélose mannitol-sel contient environ 7,5 pour cent de chlorure de sodium et du rouge de phénol ; la gélose TCBS sélectionne Vibrio cholerae par les sels biliaires et révèle la fermentation du saccharose par des colonies jaunes ; les milieux de transport de Stuart, de Cary-Blair et de Pikes gardent les pathogènes vivants sans prolifération, et le bouillon de viande cuite conserve une culture.
Approfondir
Exemple travaillé
Des selles de choléra : du prélèvement au diagnostic confirmé. Un patient arrive avec une diarrhée profuse, indolore, d’aspect eau de riz, et une déshydratation sévère, pendant une épidémie de choléra. La suspicion clinique est forte, mais l’équipe a besoin d’une confirmation de laboratoire et d’un résultat de sensibilité. Vous êtes l’infirmière chargée de recueillir le prélèvement et de l’envoyer correctement. Reprenez ce qui se passe, milieu par milieu, et pourquoi chaque étape est dans cet ordre.
Recueillir le prélèvement avant les antibiotiques et l’envoyer dans le bon contenant. Prélevez des selles fraîches ou un écouvillon rectal en milieu de transport de Cary-Blair si le laboratoire n’est pas sur place, étiquetez avec l’heure et la suspicion clinique, et envoyez sans délai. Vibrio cholerae ne survit pas à la dessiccation et est tué par le froid : l’échantillon est donc conservé à température ambiante et jamais congelé.
Enrichir l’échantillon en milieu liquide, car l’organisme peut être rare. Le laboratoire ensemence de l’eau peptonée alcaline, milieu d’enrichissement liquide à pH alcalin qui favorise Vibrio et supprime une grande partie de la flore fécale. Après quelques heures d’incubation, le nombre de vibrions a suffisamment augmenté pour être détecté sur boîte, ce que l’ensemencement direct des mêmes selles aurait pu manquer.
Ensemencez sur un milieu à la fois sélectif et différentiel. Le bouillon est étalé sur gélose TCBS, dont les sels biliaires inhibent les organismes indésirables et dont le saccharose et le bleu de bromothymol révèlent le résultat : Vibrio cholerae fermente le saccharose, produit de l’acide et forme des colonies jaunes sur fond vert. Une boîte seulement sélective aurait dit au laboratoire qu’un organisme a poussé ; l’indicateur rend l’identification possible.
Confirmer la souche et agir sur le résultat. L’agglutination sur lame avec un antisérum spécifique, puis les tests biochimiques, confirment l’espèce, et l’antibiogramme guide le traitement, car la résistance aux anciens médicaments est fréquente. Votre travail infirmier se poursuit parallèlement : réhydrater et corriger les électrolytes, appliquer une hygiène des mains stricte et une évacuation sûre des matières fécales, et déclarer le cas à l’autorité de santé publique, car un cas confirmé de choléra est un signal concernant l’approvisionnement en eau de toute une communauté.
Remarquez la forme de la chaîne : le transport protège l’organisme, l’enrichissement le multiplie, une boîte sélective l’isole, une boîte indicatrice l’identifie, et la confirmation avec l’antibiogramme en font un traitement. Chaque milieu a une seule fonction, et un milieu choisi pour la mauvaise fonction fait perdre le diagnostic. La même chaîne, avec d’autres milieux, s’applique à un prélèvement urinaire, à un écouvillon de plaie ou à des crachats.
Idée fausse fréquente
L’erreur de débutant la plus fréquente consiste à traiter les sept catégories comme sept cases séparées et à supposer qu’un milieu n’appartient qu’à une seule. En réalité, ces catégories décrivent des actions différentes, et une même boîte peut remplir deux fonctions : la gélose mannitol-sel sélectionne par le sel et différencie par le mannitol et le rouge de phénol ; le milieu de Lowenstein–Jensen nourrit le bacille tuberculeux par l’œuf et le sélectionne par le vert malachite ; la gélose au sang enrichit et montre l’hémolyse. Une deuxième erreur est de confondre enrichi et d’enrichissement, alors que les deux mots ne diffèrent que de quelques lettres. Un milieu enrichi est solide ou liquide et reçoit du sang, de l’œuf ou du sérum pour la nutrition ; un milieu d’enrichissement est un liquide qui multiplie un organisme rare. Une troisième erreur est de lire un résultat de croissance comme un diagnostic : une boîte sélective peut cultiver un organisme qui ne fait que coloniser le patient ; la boîte, la coloration de Gram et l’état du patient doivent donc toujours être lus ensemble.
Vérifiez votre raisonnement
Pensez à un prélèvement que vous avez vu recueillir : urines, selles, écouvillon de plaie ou de gorge. Si le laboratoire téléphonait pour dire que la culture n’a donné qu’un mélange de flore normale, comment décideriez-vous si le prélèvement a été mal fait, si le patient n’a réellement pas d’infection, ou si le mauvais milieu a été utilisé ?
Afficher une réponse
Comparez trois éléments. D’abord le prélèvement lui-même : a-t-il été pris au bon endroit, en technique stérile, avant les antibiotiques, dans le bon contenant et le bon milieu de transport ? Un écouvillon de plaie superficiel ou des selles laissées au chaud sur la paillasse ne cultiveront qu’une flore normale, et la faute tient au recueil, non au patient. Ensuite le milieu : une boîte non sélective ne peut pas isoler un pathogène d’un site porteur d’une flore normale ; le choix du milieu fait donc partie de la question. Enfin le patient : si le tableau clinique reste celui d’une infection, le résultat doit être remis en question — un nouveau prélèvement, un autre milieu ou un test moléculaire peuvent être nécessaires. Une culture négative est une preuve, non une démonstration, et elle doit être lue avec le patient.
D’où vient ce contenu
BMS 114 General Microbiology I lecture notes (supplied) · “Types of culture media based on chemical composition/application”, lines 1174–1263: the seven categories, basal and enriched media, selective media and their examples, enrichment media, indicator or differential media, transport media and storage media.
Correction to the supplied notes — mannitol salt agar and Vibrio cholerae · Correction to the supplied notes: line 1212 calls the medium “Mannitol Agar” and gives 7 % sodium chloride; the medium is mannitol salt agar and the salt concentration is about 7.5 %. Line 1222 writes “Vibrio cholera”; the correct species name is Vibrio cholerae. Line 1196 writes “N. gonorrhea”; the correct name is Neisseria gonorrhoeae.
Correction to the supplied notes — the storage medium called “NA egg saline” · Correction to the supplied notes: line 1263 lists “NA egg saline” as a storage medium. That is not a recognisable culture-medium name and the abbreviation is unclear, so it should not be repeated as written. The standard examples are cooked meat broth, egg-saline slopes and nutrient agar stabs.
Beyond the supplied notes — inhibitor chemistry, enrichment ratios and the expanded transport abbreviation · the notes mention “VR” transport medium at lines 1257–1258 without expansion; this is the Venkatraman–Ramakrishnan medium for cholera. The chemistry of selectivity (bile salts and deoxycholate, crystal violet, malachite green, tellurite, osmotic stress and alkaline pH), the growth-factor requirements and carbon dioxide atmosphere of Neisseria gonorrhoeae, the twelve-to-eighteen-hour selenite F enrichment interval, and the biochemical and serological confirmation of Salmonella Typhi are standard diagnostic microbiology.
La progression des leçons est enregistrée sur cet appareil pour l’apprenant actuel. Les réponses d’entraînement restent séparées et ne sont pas conservées.
À propos de ce cours et de ses sources
Leçons bilingues organisées à partir des notes de cours BMS 114 Microbiologie générale I fournies (M. Ngotelo F. Ambene, M. Lyonga B. Lyonga et M. Fumbui Louis Ngong). Les schémas sont des illustrations pédagogiques originales ; les sections qui corrigent les notes ou les dépassent le précisent dans leurs sources. La révision infirmière et francophone est en attente.