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BMS 114 · Tronc communSection 3.3 · La cellule bactérienne
Section 11 sur 33

La paroi cellulaire et la coloration de Gram

Expliquer le rôle de la paroi bactérienne, décrire les différences entre une paroi Gram positif et une paroi Gram négatif, dérouler les quatre étapes de la coloration de Gram en expliquant pourquoi l’alcool décolore une paroi mince et pas une paroi épaisse, et utiliser ce résultat comme première étape rapide dans la méningite et l’arthrite septique.

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  1. Apprendre présente une seule idée courte à la fois. Chaque idée commence par une phrase simple, puis l’explique, donne un exemple et vous pose une petite question à laquelle vous pouvez répondre tout de suite.
  2. Explorer montre un schéma des mêmes idées. Cliquez sur les parties numérotées pour lire ce que chacune représente.
  3. Vérifier pose quelques questions. Répondez correctement à toutes pour terminer la section et débloquer la suivante.
  4. « Approfondir » est facultatif. Il ajoute le mécanisme et des détails pour quand vous serez prêt — aucune notion nécessaire aux questions n’y est cachée.
Pourquoi c’est important

La coloration de Gram est la réponse la plus rapide qu’un laboratoire de microbiologie puisse vous donner, et dans une méningite ou une arthrite septique, c’est sur elle que repose le choix du premier antibiotique. Pour l’utiliser sans danger, il faut savoir ce qu’elle lit réellement : l’architecture de la paroi bactérienne. Une paroi épaisse retient le colorant, une paroi mince le perd, et cette paroi mince appartient aux organismes porteurs d’une endotoxine capable de faire chuter la pression artérielle en quelques heures. Cette section explique la structure, la chimie de la coloration et les conséquences au chevet du patient.

Ce qu’il faut savoir avant

Il vous suffit de la notion de cellule vue dans les sections précédentes : une limite, un intérieur et un matériel génétique. Quatre mots sont définis ci-dessous et employés partout : peptidoglycane, Gram positif, Gram négatif et endotoxine. La membrane et le cytoplasme ont déjà été décrits à la section 3.2 ; ici, nous nous intéressons à l’enveloppe qui les entoure et à la coloration qui la révèle.

Mots à connaître (5)
Peptidoglycane
Polymère en forme de maillage, fait de sucres et de courts peptides, qui donne à la paroi bactérienne sa solidité et sa forme. La pénicilline fragilise le peptidoglycane pendant que la bactérie se développe.
Gram positif
Se dit d’une bactérie dont l’épaisse paroi de peptidoglycane retient le complexe violet–iode et qui apparaît donc violette au microscope. Staphylococcus aureus est Gram positif.
Gram négatif
Se dit d’une bactérie dont la mince paroi de peptidoglycane perd le complexe violet pendant la décoloration, puis fixe le colorant de contraste rose. Escherichia coli est Gram négatif.
Membrane externe
Seconde membrane située à l’extérieur de la couche de peptidoglycane chez une bactérie Gram négatif, et contenant des lipopolysaccharides et des protéines. La membrane externe ralentit la pénétration de nombreux antibiotiques et colorants.
Lipopolysaccharide (endotoxine)
Grande molécule de lipide et de sucre ancrée dans la membrane externe des bactéries Gram négatif ; libérée à la destruction de la cellule, elle déclenche fièvre et choc. L’endotoxine des bactéries Gram négatif peut provoquer un choc septique.
Une idée à la foisIdée 1 / 6

En une phrase La paroi est une enveloppe rigide qui conserve la forme de la bactérie et l’empêche d’éclater dans un milieu dilué.

La paroi cellulaire est la coque résistante de la bactérie

Une bactérie vit dans un milieu généralement plus dilué que son propre intérieur : l’eau entre donc dans la cellule par osmose. Sans une enveloppe solide, la cellule gonflerait et éclaterait. La paroi cellulaire est cette enveloppe : elle donne à la bactérie sa forme — ronde, en bâtonnet ou spiralée — et la protège contre les lésions osmotiques. Elle se situe à l’extérieur de la membrane cytoplasmique. Sa solidité vient d’un polymère appelé peptidoglycane, qui forme un maillage continu autour de la cellule. Toutes les bactéries n’en possèdent pas : les mycoplasmes en sont dépourvus, ce qui explique en partie leur fragilité et leurs formes inhabituelles. Comme les cellules humaines n’ont pas de peptidoglycane, la paroi est une cible sûre pour des médicaments comme la pénicilline, qui empêchent sa construction pendant la croissance.

Par exemple

Placez une bactérie dans de l’eau pure : la paroi est la seule raison pour laquelle elle ne se remplit pas et n’éclate pas comme un ballon trop gonflé.

Petite vérification

Pourquoi un médicament qui bloque le peptidoglycane peut-il tuer une bactérie sans nuire aux cellules du patient ?

Afficher la réponse

Parce que les cellules humaines n’ont pas de paroi de peptidoglycane. Le médicament attaque une structure que la bactérie doit construire pour survivre, tandis que les cellules du patient continuent de fonctionner normalement.

Lire les explications détaillées
La chimie du peptidoglycane, et pourquoi l’alcool peut laver une paroi

Le peptidoglycane, appelé aussi muréine, est une molécule géante tissée autour de toute la bactérie. Son squelette est fait de deux amino-sucres alternés, la N-acétylglucosamine et l’acide N-acétylmuramique, réunis en longs brins de glycanes. De courtes chaînes peptidiques pendent des unités d’acide muramique, et les brins voisins sont attachés par des ponts entre ces chaînes ; chez Staphylococcus aureus, un pont de pentaglycine les relie, et l’enzyme qui forme cette liaison est une transpeptidase ancrée dans la membrane. La pénicilline et les autres bêta-lactamines imitent l’extrémité de la chaîne peptidique, occupent la transpeptidase et empêchent les nouvelles liaisons : une bactérie en croissance construit alors une paroi percée et éclate. Le lysozyme, enzyme présente dans les larmes et la salive, attaque la même couche autrement, en coupant la liaison entre les deux amino-sucres. La paroi Gram positif est en outre traversée d’acides teichoïques, polymères chargés négativement qui aident à fixer les cations et que l’on ne trouve pas chez les Gram négatif. L’épaisseur de ce maillage explique la coloration. L’alcool déshydrate le peptidoglycane et le contracte ; dans une paroi épaisse, les pores se ferment et le volumineux complexe violet–iode reste physiquement piégé, alors qu’une paroi mince a trop peu de matière pour se refermer autour de lui. Chez les Gram négatif, l’alcool dissout en plus la membrane externe riche en lipopolysaccharides et en extrait les lipides, si bien que le colorant sort librement. C’est pourquoi l’étape de décoloration, et non le colorant, décide de la réaction de Gram, et pourquoi le temps et l’épaisseur du frottis sont les deux variables les plus surveillées au laboratoire. Cela explique aussi la variabilité de Gram : une culture âgée dont la paroi commence à s’autolyser retient mal le colorant et donne un résultat ambigu.

Pourquoi une septicémie Gram négatif donne fièvre, hypotension et choc, alors qu’une infection Gram positif suppure souvent localement

Lorsque des bactéries Gram négatif se multiplient dans le sang, la partie lipidique A de leur lipopolysaccharide est le signal qui transforme un problème local en problème général. Le lipide A se fixe sur des récepteurs des monocytes et des macrophages et leur fait libérer des cytokines — facteur de nécrose tumorale, interleukine-1 et interleukine-6 — dans la circulation. Ces cytokines agissent sur l’hypothalamus pour élever la température corporelle, ce qui provoque la fièvre et les frissons, et elles font dilater les vaisseaux. La vasodilatation généralisée abaisse les résistances vasculaires systémiques : la pression artérielle chute même si le cœur s’accélère ; les capillaires laissent fuir du liquide dans les tissus, et l’association de vasodilatation, de fuite capillaire, de microthrombose et de mauvaise perfusion tissulaire produit le choc septique. Le lactate monte à mesure que les tissus manquent d’oxygène, et une dépression du myocarde peut suivre. L’endotoxine n’est pas détruite par l’ébullition et n’est pas neutralisée par les antibiotiques ordinaires ; tuer les bactéries peut même en libérer une nouvelle vague, ce qui explique que le choc septique puisse s’aggraver dans les premières heures d’un traitement pourtant correct. Les organismes Gram positif peuvent aussi provoquer des infections sanguines graves, mais leur comportement local est différent. Beaucoup d’entre eux — Staphylococcus aureus et Streptococcus pyogenes sont les exemples classiques — provoquent une collection enkystée de polynucléaires et de tissu mort, un abcès, et le pus reste localisé jusqu’au drainage. Ils sécrètent des enzymes comme la coagulase qui font coaguler le plasma autour de l’infection, et des exotoxines qui agissent à distance. La différence pratique pour l’infirmière tient donc au tableau à surveiller : une infection Gram négatif peut se présenter par de la fièvre, une pression artérielle qui baisse, une respiration rapide et de la confusion alors que le site d’origine semble peu impressionnant, tandis qu’une infection Gram positif se manifeste souvent par un foyer douloureux, gonflé et suppurant. Les deux exigent la même discipline : prélever avant les antibiotiques, traiter rapidement et répéter la mesure des signes vitaux.

Ce qui peut rendre une coloration de Gram ininterprétable

Un compte rendu de coloration de Gram ne vaut que ce que vaut le frottis dont il provient, et plusieurs problèmes très différents peuvent le rendre illisible. La variable de laboratoire la plus fréquente est la décoloration : trop d’alcool, ou un alcool laissé trop longtemps, enlève le violet même des cellules Gram positif, si bien que tout paraît Gram négatif ; trop peu d’alcool laisse le violet dans les cellules Gram négatif, et tout paraît Gram positif. Ces deux erreurs se contrôlent en traitant une lame de référence positive et une lame négative connues en même temps que le prélèvement du patient, et en gardant un temps constant. L’épaisseur du frottis compte autant : un film épais et dense retient le colorant et se décolore irrégulièrement, si bien que des parties du même champ se contredisent. Un prélèvement très pauvre — peu d’organismes dans un grand volume de liquide — peut simplement ne rien contenir à voir, surtout au début d’une méningite, où le liquide céphalorachidien peut être clair et la coloration négative alors que le patient est infecté ; une coloration négative n’exclut jamais une infection. L’organisme lui-même peut tromper. Les espèces Gram variables, comme certains Bacillus et Clostridium, et les cultures âgées dont la paroi commence à s’autolyser, se colorent faiblement et de façon inconstante. Mycobacterium tuberculosis possède une paroi cireuse, riche en acides mycoliques, qui résiste aux colorants et n’est pas visible sur une coloration de Gram ordinaire ; il faut la méthode de Ziehl–Neelsen. Mycoplasma n’a pas de paroi ; les spirochètes comme Treponema pallidum sont trop fins pour être résolus en microscopie optique à fond clair et exigent un fond noir ou des colorations spéciales. Les antibiotiques déjà administrés faussent le tableau en réduisant le nombre de bactéries ou en modifiant leur forme. Le contenu du prélèvement gêne aussi : le sang, le mucus, la mucine, les débris inflammatoires et l’hémolyse peuvent masquer les organismes ou laisser un précipité qui les imite. Enfin, l’interprétation dépend de l’observateur, d’où le recours des laboratoires à un personnel formé, à des procédures écrites, à des contrôles de compétence et à une lame témoin dans chaque série. Pour l’infirmière, les messages sont concrets : prélever avant les antibiotiques, envoyer sans délai, étiqueter complètement, et considérer une coloration négative comme un élément de preuve et non comme la preuve qu’il n’y a pas d’infection.

Lire la coloration en pratique : morphologie, diagnostic présomptif et culture nécessaire

Une fois la couleur connue, la seconde information est la morphologie, et leur combinaison réduit le champ bien plus que ne l’imaginent les débutants. Des coques Gram positif en amas évoquent Staphylococcus ; en chaînettes, Streptococcus. Des bacilles Gram positif dans une plaie peuvent être des diphtéroïdes ou des Clostridium. Des diplocoques Gram négatif à l’intérieur des polynucléaires du liquide céphalorachidien évoquent fortement Neisseria meningitidis, et des diplocoques Gram négatif dans un prélèvement urétral évoquent Neisseria gonorrhoeae. Les bacilles Gram négatif ouvrent un large diagnostic différentiel qui comprend Escherichia coli, Klebsiella, Pseudomonas aeruginosa et bien d’autres, sans que la coloration puisse les séparer. De gros bacilles Gram positif à spore centrale font penser à Bacillus anthracis dans le bon contexte, mais la spore ne l’identifie pas. C’est pourquoi la coloration est dite présomptive : elle appuie un diagnostic probable et guide le traitement empirique, tandis que le nom définitif vient de la culture et de l’identification. Au laboratoire, l’identification peut utiliser des réactions biochimiques, la détection d’antigènes, la sérologie, la spectrométrie de masse de type MALDI-TOF, ou des méthodes moléculaires comme la réaction de polymérisation en chaîne et le séquençage de l’ARN ribosomique. L’étude de la sensibilité mesure ensuite quels médicaments arrêtent la souche. Deux habitudes en découlent pour l’infirmière. D’abord, la coloration et la culture sont complémentaires et non interchangeables : le prélèvement doit être recueilli avant le premier antibiotique et transporté sans délai dans le bon contenant. Ensuite, un compte rendu préliminaire n’est pas un diagnostic définitif : il doit déclencher le bon traitement et les bonnes précautions, mais aussi une question — le patient correspond-il à ce tableau ?

Explorez le schéma

Observez d’abord le dessin entier. Puis sélectionnez une partie numérotée et reliez-la à l’idée que vous venez de lire.

Deux parois, une coloration : pourquoi la réaction de Gram se produit

Comparez les deux enveloppes couche par couche, puis suivez les quatre réactifs vers le bas. Le maillage épais Gram positif piège le complexe violet–iode ; la paroi mince Gram négatif le perd dès que l’alcool a dissous la membrane externe, riche en lipides et porteuse de l’endotoxine.

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01 / 6Épaisse couche de peptidoglycane

Deux parois, une coloration : pourquoi la réaction de Gram se produitComparez les deux enveloppes couche par couche, puis suivez les quatre réactifs vers le bas. Le maillage épais Gram positif piège le complexe violet–iode ; la paroi mince Gram négatif le perd dès que l’alcool a dissous la membrane externe, riche en lipides et porteuse de l’endotoxine.La coloration de Gram lit la paroiParoi Gram positifPeptidoglycane épaisnombreuses couches réticuléesCytoplasmevsParoi Gram négatifMembrane externe +lipopolysaccharide (LPS)Peptidoglycane minceEspace périplasmiqueCytoplasme1 · Violet de gentianeColore toutes les cellules2 · IodeMordant fixe le colorant3 · AlcoolDécoloreparoi mince seulement4 · SafranineContraste roseGram positif : le violet resteParoi épaisse : complexe piégéGram négatif : devient roseParoi mince : complexe perduLa couleur se lit avec la forme :coques en amas ou en chaînes, bacilles, diplocoquesLa culture reste nécessaire pour nommer l’espèce.

Si le schéma dépasse ce cadre, faites-le défiler latéralement. Les repères restent lisibles ; les explications numérotées ci-dessous présentent les mêmes idées.

Épaisse couche de peptidoglycane

L’enveloppe Gram positif est dominée par de nombreuses couches de peptidoglycane réticulées, ce qui rend la paroi épaisse et rigide. Quand l’alcool contracte ce maillage, les espaces se ferment et le volumineux complexe violet–iode ne peut plus s’échapper : la cellule garde le violet et est rapportée Gram positif.

Comparaison schématique, sans échelle : l’épaisseur réelle de la couche de peptidoglycane varie selon les espèces, et les quatre réactifs sont représentés comme une seule séquence appliquée aux deux types de cellules. Un compte rendu de Gram est présomptif et doit être confirmé par la culture.

Points clés à retenir

  • La paroi donne sa forme à la bactérie et la protège de la lyse osmotique ; sa solidité vient du peptidoglycane.
  • Les parois Gram positif ont un peptidoglycane épais ; les parois Gram négatif ont un peptidoglycane mince et une membrane externe portant des lipopolysaccharides (endotoxines).
  • La coloration suit violet de gentiane, iode, décoloration à l’alcool et safranine ; l’alcool décide du résultat, car il emporte le colorant de la paroi mince et riche en lipides, mais pas de la paroi épaisse.
  • La méthode porte le nom de Hans Christian Gram et s’applique à des liquides comme le liquide céphalorachidien dans la méningite et le liquide synovial dans l’arthrite septique ; elle est plus rapide que la culture, mais ne nomme pas l’espèce.
Approfondir

Exemple travaillé

De « bacilles Gram négatif dans l’articulation » à un plan de soins sûr. Un patient de 62 ans arrive avec un genou chaud, gonflé et douloureux, et une température élevée. Une arthrite septique est suspectée et vous aidez à recueillir le liquide synovial pour coloration de Gram et culture. Le liquide est épais et purulent. Dans l’heure, le laboratoire téléphone : des bacilles Gram négatif sont visibles. Utilisez la structure de la paroi et les étapes de la coloration pour expliquer ce qui s’est passé, ce qui peut suivre et ce que vous devez faire ensuite.

  1. Lire ce que la coloration dit réellement. Le compte rendu donne deux faits : la couleur est Gram négatif et la forme est un bacille. Le rose n’est pas le colorant d’origine ; c’est la safranine fixée après que l’alcool a emporté le violet. Gram négatif signifie une mince couche de peptidoglycane avec une membrane externe : l’organisme porte donc une endotoxine.
  2. Expliquer le mécanisme pour vous-même et pour l’équipe. L’alcool a dissous la membrane externe riche en lipides et contracté le peu de peptidoglycane présent : aucun maillage dense ne pouvait retenir le complexe violet–iode. C’est pourquoi la cellule a perdu la couleur qu’une cellule Gram positif aurait gardée.
  3. Agir sur le résultat préliminaire sans attendre la culture. Téléphonez ou remettez le compte rendu au prescripteur immédiatement : des bacilles Gram négatif dans une articulation orientent le choix d’un antibiotique empirique actif sur les Gram négatif. Le prélèvement est déjà parti pour la culture et l’antibiogramme, et la première dose ne doit pas être retardée.
  4. Anticiper la conséquence générale de l’endotoxine. Comme l’endotoxine peut provoquer fièvre, vasodilatation et chute de la pression artérielle, surveillez la température, le pouls, la pression artérielle, la fréquence respiratoire et la diurèse, et considérez le patient dans son ensemble plutôt que le seul genou. Signalez immédiatement toute dégradation.
  5. Poursuivre le rôle infirmier. Administrez les antibiotiques à l’heure, maintenez l’articulation au repos et confortable jusqu’au drainage, manipulez le liquide comme infectieux, documentez la chronologie et expliquez au patient que la coloration est un premier indice tandis que la réponse définitive viendra de la culture.

Le genou est le problème visible, mais le résultat Gram négatif est un avertissement pour tout le patient. La structure de la paroi explique à la fois la couleur sur la lame et le risque de choc. L’infirmière qui la comprend recueille correctement le prélèvement, surveille les signes vitaux et signale précocement toute évolution.

Idée fausse fréquente

Une erreur fréquente du débutant est de croire qu’un résultat Gram négatif signifie une infection moins grave parce que le pus est moins impressionnant, ou qu’un résultat Gram positif exclut une maladie sévère. Le danger inverse est courant : les organismes Gram négatif portent une endotoxine et peuvent provoquer un choc avec peu de signes locaux, tandis que des organismes Gram positif comme Staphylococcus aureus peuvent détruire localement les tissus et, parfois, provoquer un choc toxique. Une deuxième erreur est de prendre le compte rendu de Gram pour une identification définitive : c’est un classement préliminaire qui doit être confirmé par la culture.

Vérifiez votre raisonnement

Pensez à un patient dont l’infection a été explorée par une coloration de Gram. Qu’ont apporté la couleur et la forme, qu’est-ce qu’elles n’ont pas prouvé, et quelle action infirmière a protégé le patient pendant que la culture était encore en cours ?

Afficher une réponse

Prenons une méningite bactérienne. La coloration de Gram du liquide céphalorachidien peut montrer des diplocoques Gram négatif en moins d’une heure, ce qui évoque fortement Neisseria meningitidis et justifie un traitement immédiat et des précautions de type gouttelettes. Elle ne prouve pas l’espèce et ne donne aucune sensibilité, d’où la culture et l’antibiogramme. Pendant l’attente de la culture, les actions infirmières qui protègent le patient sont l’envoi rapide du liquide, l’administration à l’heure de l’antibiotique prescrit, l’isolement requis et la surveillance de la conscience, de la température et des signes vitaux.

D’où vient ce contenu

  • BMS 114 General Microbiology I lecture notes (supplied) · “Cell wall” and “Gram stain for the cell wall”, lines 662–703, with the cell-envelope context at lines 599–610
  • Beyond the supplied notes — peptidoglycan chemistry and the mechanism of decolourisation · the alternating aminosugar backbone (N-acetylglucosamine and N-acetylmuramic acid), peptide cross-links, the transpeptidase reaction, the teichoic acids of the Gram-positive wall, and the physical trapping of the violet–iodine complex. The notes name peptidoglycan and list the four reagents at lines 663–679 but give no chemistry and no explanation of why alcohol differentiates the two groups.
  • Beyond the supplied notes — lipopolysaccharide, endotoxin and the clinical pattern of Gram-negative infection · lipid A, cytokine release, vasodilatation, microthrombosis and septic shock, contrasted with the walled-off suppuration and exotoxins of Gram-positive infection. The notes mention toxic lipopolysaccharides (endotoxins) at lines 671–672 without mechanism or clinical consequence.
  • Beyond the supplied notes — causes of an uninterpretable Gram stain · over- and under-decolourisation, smear thickness, Gram-variable and wall-deficient organisms, the Ziehl–Neelsen method for Mycobacterium, and the use of control slides. The notes describe the method at lines 675–689 without its limitations.

La progression des leçons est enregistrée sur cet appareil pour l’apprenant actuel. Les réponses d’entraînement restent séparées et ne sont pas conservées.

À propos de ce cours et de ses sources

Leçons bilingues organisées à partir des notes de cours BMS 114 Microbiologie générale I fournies (M. Ngotelo F. Ambene, M. Lyonga B. Lyonga et M. Fumbui Louis Ngong). Les schémas sont des illustrations pédagogiques originales ; les sections qui corrigent les notes ou les dépassent le précisent dans leurs sources. La révision infirmière et francophone est en attente.